產(chǎn)品基本信息

CAS：11016-15-2

分子量：~264,000

Ex(nm):616

Ex(nm):647

熒光量子產(chǎn)率（QY）：0.81

產(chǎn)品介紹

藻膽蛋白[包括B-藻紅蛋白（B-PE），R-藻紅蛋白（R-PE）和別藻藍(lán)蛋白（APC）]是用于生物學(xué)檢測(cè)的超靈敏熒光染料。 它們比傳統(tǒng)的有機(jī)熒光團(tuán)靈敏度高100倍。 即使在諸如流式細(xì)胞術(shù)和免疫測(cè)定的實(shí)際應(yīng)用中，藻膽蛋白綴合的抗體的靈敏度通常遠(yuǎn)大于相應(yīng)的基于有機(jī)分子的綴合物的靈敏度。 Phycobiliproteins是亮的熒光標(biāo)簽，具有多個(gè)位點(diǎn)，可與許多生物和合成材料形成穩(wěn)定的結(jié)合。

• 藻紅蛋白（B-PE）具有三個(gè)吸收帶，在545nm處具有大吸收。 B-PE的亞基結(jié)構(gòu)類似于R-PE，但亞基的發(fā)色團(tuán)含量不同，導(dǎo)致吸收峰的相對(duì)強(qiáng)度不同：α和β亞基僅含有PEB，而γ亞基含有PEB和PUB。 B-PE存在于藍(lán)細(xì)菌和紅藻中。 B-PE的強(qiáng)烈粉紅色和橙色熒光幾乎與肉眼無(wú)法區(qū)分的R-PE。別藻藍(lán)蛋白在主要的藻膽蛋白中是不穩(wěn)定的，在低濃度下易于解離，包括進(jìn)行某些測(cè)定的濃度。 出于這個(gè)原因，許多研究人員更喜歡使用在α和β亞基之間化學(xué)交聯(lián)的CL-APC，并且比APC更穩(wěn)定。

• 藻紅蛋白（R-PE）從紅藻中分離。其主要吸收峰位于565nm，第二峰位于496nm和545nm。 次生峰的相對(duì)突出性在來(lái)自不同物種的R-PE之間顯著不同。R-PE具有三種類型的亞基：α（~20,000道爾頓），β（~20,000道爾頓）和γ（~30,000道爾頓）。已發(fā)現(xiàn)完整R-PE的分子量為約240,000道爾頓，并且已確定（αβ）6γ的亞基結(jié)構(gòu)。R-PE的α亞基僅含有藻紅蛋白（PEB）發(fā)色團(tuán)，而β和γ亞基含有PEB和藻藍(lán)蛋白（PUB）。來(lái)自不同物種的R-PE的吸收光譜的可變性反映了亞基的PEB / PUB比率的差異。R-PE和密切相關(guān)的B-PE是強(qiáng)熒光的藻膽蛋白，其量子效率可能超過(guò)90％，并且在任何中等濃度的溶液中，其橙色熒光很容易被肉眼看到。

C-藻藍(lán)蛋白（C-PC）在許多藍(lán)細(xì)菌中作為主要的藻膽蛋白發(fā)生，在一些紅藻中作為次生的藻膽蛋白發(fā)生。該顏料在615和620nm之間具有單個(gè)可見(jiàn)吸收大值，在~650nm處具有大熒光發(fā)射。其分子量在70,000至110,000道爾頓之間。顏料由兩個(gè)亞基α和β組成，它們以相同的數(shù)量出現(xiàn)，但構(gòu)成分子的α和β對(duì)的確切數(shù)目可能因物種而異。α和β亞基都僅含有PCB發(fā)色團(tuán)。 除了直接吸收光之外，這種強(qiáng)烈的藍(lán)色顏料通過(guò)熒光能量轉(zhuǎn)移接受來(lái)自藻紅蛋白的量子，其中存在PE的生物體。C-PC的紅色熒光轉(zhuǎn)移到別藻藍(lán)蛋白。AAT Bioquest研發(fā)的RPE、APC試劑及試劑盒被國(guó)內(nèi)外科研人員靈活運(yùn)用，達(dá)到不俗的科研成果。

參考文獻(xiàn)

Chromophore attachment to phycobiliprotein beta-subunits: phycocyanobilin:cysteine-beta84 phycobiliprotein lyase activity of CpeS-like protein from Anabaena Sp. PCC7120
Authors: Zhao KH, Su P, Li J, Tu JM, Zhou M, Bubenzer C, Scheer H.
Journal: J Biol Chem (2006): 8573

Excitation energy transfer from phycobiliprotein to chlorophyll d in intact cells of Acaryochloris marina studied by time- and wavelength-resolved fluorescence spectroscopy
Authors: Petrasek Z, Schmitt FJ, Theiss C, Huyer J, Chen M, Larkum A, Eichler HJ, Kemnitz K, Eckert HJ.
Journal: Photochem Photobiol Sci (2005): 1016

Single-molecule spectroscopy selectively probes donor and acceptor chromophores in the phycobiliprotein allophycocyanin
Authors: Loos D, Cotlet M, De Schryver F, Habuchi S, Hofkens J.
Journal: Biophys J (2004): 2598

evaluation of Tolypothrix germplasm for phycobiliprotein content
Authors: Prasanna R, Prasanna BM, Mohammadi SA, Singh PK.
Journal: Folia Microbiol (Praha) (2003): 59

Isolation and characterisation of phycobiliprotein rich mutant of cyanobacterium Synechocystis sp
Authors: Prasanna R, Dhar DW, Dominic TK, Tiwari ON, Singh PK.
Journal: Acta Biol Hung (2003): 113

Co-ordinated expression of phycobiliprotein operons in the chromatically adapting cyanobacterium Calothrix PCC 7601: a role for RcaD and RcaG
Authors: Noubir S, Luque I, Ochoa de Alda JA, Perewoska I, Tandeau de Marsac N, Cobley JG, Houmard J.
Journal: Mol Microbiol (2002): 749

Phycobiliprotein genes of the marine photosynthetic prokaryote Prochlorococcus: evidence for rapid evolution of genetic heterogeneity
Authors: Ting CS, Rocap G, King J, Chisholm SW.
Journal: Microbiology (2001): 3171

Novel activity of a phycobiliprotein lyase: both the attachment of phycocyanobilin and the isomerization to phycoviolobilin are catalyzed by the proteins PecE and PecF encoded by the phycoerythrocyanin operon
Authors: Zhao KH, Deng MG, Zheng M, Zhou M, Parbel A, Storf M, Meyer M, Strohmann B, Scheer H.
Journal: FEBS Lett (2000): 9

Phycobiliprotein-Fab conjugates as probes for single particle fluorescence imaging
Authors: Triantafilou K, Triantafilou M, Wilson KM.
Journal: Cytometry (2000): 226

[Phycobiliprotein and fluorescence immunological assay]
Authors: Wu P.
Journal: Sheng Li Ke Xue Jin Zhan (2000): 82